Bienvenido al Laboratorio de Citología

El Laboratorio de Citología del Laboratorio de Higiene del Estado de Wisconsin (WSLH) fue iniciado en 1947 por el Dr. William D. Stovall, director y patólogo de WSLH. Pensó que la citología exfoliativa era una importante nueva prueba de salud pública que debería estar disponible en Wisconsin. Hizo arreglos para que Norma Arvold, una tecnóloga médica del personal, se capacitara en esta especialidad con el Dr. George Papanicolaou (el fundador de la citología clínica y la prueba de Papanicolaou) en la Facultad de Medicina de la Universidad de Cornell. A su regreso de Nueva York, Arvold estableció la Unidad de Citología dentro de la Sección de Patología de WSLH y comenzó a capacitar a personal adicional en esta nueva disciplina. En WSLH de 1956 a 1959, el Instituto Nacional del Cáncer financió un programa para evaluar la eficacia de la detección del cáncer de cuello uterino mediante la técnica de prueba de Papanicolaou. El éxito de este programa aumentó considerablemente la demanda de citotécnicos y en 1957 se estableció la Escuela de Citotecnología WSLH. Hoy, el programa premiado es una de las instituciones educativas de citotecnología más grandes del país. El personal del Departamento de Citología de WSLH también participa en la capacitación de citotécnicos y residentes en el hospital y las clínicas de la Universidad de Wisconsin. Durante más de 50 años, el departamento de citología de WSLH se ha mantenido a la vanguardia de su profesión. El departamento ofrece pruebas de citología de servicio completo, incluidos servicios de aspiración con aguja fina y no ginecológicos. En la década de 1990, el laboratorio fue uno de los primeros sitios de prueba para la "prueba de Papanicolaou en líquido". El departamento de citología de WSLH ha integrado la prueba de Papanicolaou con la prueba de VPH molecular auxiliar como prueba refleja y como prueba de referencia para mujeres de 30 años o más.

VNJ 27-187-188). El propósito de este artículo es presentar a las enfermeras veterinarias la citología de fluidos de la cavidad corporal. Cubrirá las técnicas de preparación de fluidos para maximizar los beneficios de diagnóstico para el veterinario o el patólogo. Las cavidades del cuerpo, la pleura y el peritoneo, por ejemplo, están revestidas con membranas cubiertas con una sola capa de células mesoteliales. En circunstancias normales, se produce una pequeña cantidad de líquido en las cavidades, pero normalmente se reabsorbe en el sistema linfático. • aumento de la presión arterial debido a la sobrecarga de líquidos y congestión disminución del drenaje linfático debido a inflamación, congestión u obstrucción. Las muestras de fluidos generalmente se toman por abdominocentesis o toracocentesis, pero también se pueden tomar de masas quísticas que se encuentran en varias áreas del cuerpo. Luego, la muestra de líquido debe dividirse y colocarse en un tubo de sangre con EDTA, además de un tubo estéril normal en caso de que se necesite un cultivo. Es importante llenar el tubo de EDTA hasta el nivel correcto porque el anticoagulante puede afectar la forma y el tamaño de las células, además de diluir el número de células.

Primero realice un frotis directo usando la técnica de frotis de sangre o la técnica de concentración lineal descrita en la Parte 1 (VNJ 27: 187-188). Si hay "flotadores" (floculados), estos deben eliminarse con cuidado y prepararse utilizando la técnica de trituración descrita anteriormente. Estos frotis deben dejarse secar al aire antes de teñirlos o envasarlos para enviarlos a un laboratorio externo. Esta técnica es muy similar a la utilizada para la preparación de preparaciones de sedimento urinario. Coloque la muestra líquida en un tubo regular, como un tubo Eppendorf, y centrifugue la muestra a 3000 rpm durante aproximadamente tres a cinco minutos. Las velocidades exactas se pueden ajustar para adaptarse a su exprimidor individual. La forma más eficiente de preparar líquido hipocelular, como el LCR, es usar una centrífuga de citocentrifugación, pero es posible que no esté disponible en muchas prácticas. Una vez centrifugado, se elimina la mayor parte del sobrenadante, el sedimento se resuspende y luego se unta en un portaobjetos de microscopio utilizando el método de frotis de sangre o el método concentrado en línea.

Estos portaobjetos deben dejarse secar al aire. Para muestras como LCR, donde los niveles de células serán muy bajos, es mejor colocar una gota de sedimento en un portaobjetos de microscopio y dejar que se seque. Ya se conoce la zona en la que se encontrarán las células, lo que facilita mucho el examen. Luego, los portaobjetos deben teñirse de acuerdo con su protocolo interno o enviarse sin teñir a su laboratorio externo para su revisión. La evaluación cuantificada normalmente se centra en los recuentos de glóbulos rojos y nucleados, así como en los niveles de proteínas y, si es necesario, los niveles de triglicéridos y colesterol. Se pueden usar analizadores automáticos para realizar recuentos de células, pero no siempre son confiables porque no permiten la presencia de coágulos y no son muy precisos para fluidos con muy pocas células, como el LCR. Los recuentos manuales deben realizarse utilizando una cámara de recuento, como un hemocitómetro Neubauer mejorado. Si la muestra es muy celular o turbia, el líquido debe diluirse con un tampón o líquido de dilución de glóbulos blancos, si solo está interesado en el recuento de células nucleadas (NCC).

La dilución exacta no importa siempre que se conozca y las células sean individualmente visibles y contables en la cámara utilizada. En esta etapa, no se hace distinción entre glóbulos blancos inflamatorios y células tisulares como las células mesoteliales; en cambio, se llama simplemente recuento de células nucleadas. La proteína total se puede medir usando un analizador químico automatizado o un refractómetro. Se mide fácilmente a través de un refractómetro usando el mismo método que la gravedad específica de la orina pero usando una escala separada. El valor de proteína obtenido debe multiplicarse por 10, ya que los niveles suelen expresarse en g/1 y las escalas suelen leerse en g/dl. Los resultados así obtenidos son rápidos y sencillos, pero no siempre fiables y pueden verse afectados por la hemólisis y la presencia de lípidos en el quilo. Si es posible, es preferible pasar una proteína total y una albúmina en un analizador de bioquímica. En este punto sería prudente mencionar los derrames de aspecto blanco y opalescente.