Cultivo de esputo y estudio citológico

El esputo es el material expulsado de las vías respiratorias cuando tose o se aclara la garganta. Puede contener una variedad de materiales, incluidos moco, restos de células, sangre, pus y bacterias. Su médico puede solicitar un cultivo de esputo o un estudio citológico para detectar y diagnosticar infecciones bacterianas de los pulmones, como la tuberculosis. Antes de recolectar una muestra de esputo para cultivo o estudio, comuníquese con su laboratorio más cercano para obtener un recipiente de recolección estéril. Por la mañana al despertar, sonarse la nariz para evacuar las secreciones nasales y sinusales que se hayan acumulado durante la noche. Limpie y enjuague su boca, dientes y encías con agua. No se cepille con pasta de dientes. Tome una respiración profunda, inhalando a plena capacidad de sus pulmones, luego exhale tosiendo. Expectore el esputo de sus pulmones en el recipiente de recolección estéril. No expectore saliva de la boca. La saliva puede contaminar la muestra y es posible que se le pida que tome otra muestra si se determina que no es adecuada para el análisis. Lleve la muestra al laboratorio inmediatamente. Si esto no es posible, puede refrigerar la muestra hasta 24 horas antes de la entrega. Su tiempo en el laboratorio se limitará al tiempo necesario para iniciar sesión, registrarse en admisiones y dejar su muestra. Los resultados del cultivo o estudio generalmente se envían a su médico dentro de unos días; Tenga la seguridad, sin embargo, de que cualquier resultado crítico se comunica de inmediato. Su médico discutirá los resultados con usted una vez que los haya revisado. La ley de Michigan requiere que se presente una orden válida firmada por una persona autorizada antes de que se pueda realizar cualquier prueba o procedimiento de laboratorio. Las personas autorizadas se definen como médicos, asistentes médicos o enfermeras practicantes. Estos profesionales son legalmente responsables de interpretar los resultados de las pruebas en función de su conocimiento del paciente individual.

La clave para la recolección exitosa de fluidos de las cavidades corporales es el posicionamiento cuidadoso del bisel de la aguja a medida que se ingresa a la cavidad y comienza la aspiración. El bisel de la aguja siempre debe apuntar hacia la pared del cuerpo. Esto evita que la grasa omental o los pulmones obstruyan la abertura de la aguja. Si la aspiración inicial produce un golpe seco, se libera la presión negativa, se gira la jeringa 360° y se intenta de nuevo la aspiración. Después de la extirpación de una masa, la citología aún se puede utilizar para establecer un diagnóstico o para proporcionar información útil en espera de la interpretación histopatológica. Las masas extraídas se pueden aspirar al igual que las masas in vivo y se pueden hacer preparaciones de calabaza. Otras dos técnicas son particularmente adecuadas para masas extirpadas: frotis de impresión y raspados. Hay tres claves para hacer buenos frotis de impresión: 1) siempre use una superficie recién cortada que se haya secado sobre una superficie absorbente, 2) asegúrese de que la superficie cortada sea pequeña (menos de 1,0 cm2) y 3) haga varias impresiones en la misma diapositiva.

Las impresiones se toman tocando suavemente la superficie cortada de una masa o lesión en un portaobjetos de microscopio estacionario y luego levantando el tejido verticalmente sin dejar manchas. Se pueden hacer de dos a tres filas de muescas (8-15 muescas)/diapositivas y se pueden hacer múltiples diapositivas a partir de la misma superficie de corte. No todas las superficies cortadas exfoliarán fácilmente las células. Los tejidos compuestos por células epiteliales o células redondas discretas (ganglio linfático, bazo, tumor de mastocitos, etc.) se pueden imprimir fácilmente, pero las masas compuestas de tejido conectivo generalmente no se pueden modificar mediante citología de frotis de impresión. Cuando la impresión no es exitosa, se pueden usar técnicas de raspado. Las preparaciones para raspar se hacen raspando una superficie recién cortada con una hoja de bisturí. El material que se acumula en el portaobjetos se desliza suavemente a lo largo de un portaobjetos de microscopio. Solo se hace una secuencia; la cuchilla no se mueve de un lado a otro a través del material revestido. El portaobjetos se seca al aire y se tiñe como estándar.

Una vez realizadas las preparaciones citológicas, deben teñirse adecuadamente antes de poder interpretarlas. Históricamente se han defendido varias tinciones y procedimientos diferentes. La tinción de citología más fácil de usar es el nuevo azul de metileno, una tinción vital de un solo paso. El nuevo azul de metileno es una buena tinción nuclear que permite una evaluación rápida de los criterios de malignidad. Un inconveniente importante de la mancha es que no es permanente y, por lo tanto, no se puede pasar a una segunda opinión. En el otro extremo del espectro, cuando se trata de la facilidad de uso, se encuentran las manchas tipo papanicolaou. Estas tinciones se han utilizado durante mucho tiempo en citología humana pero no ofrecen ningún interés real en citología veterinaria. Estas manchas requieren una fijación húmeda y varias soluciones de tinción diferentes. Además, no son particularmente efectivos para teñir microorganismos. Por estas razones, el autor no recomienda su uso. En su lugar, el autor recomienda el uso de tinciones hematológicas estándar: tinción de Wright, Wright's-Giemsa, Wright's-Leishmann, etc. En los últimos años, se han desarrollado algunas modificaciones rápidas y sencillas de estas tinciones hematológicas (Harleco's Diff-Quik, Camco Quick Stain, etc.) y han revolucionado la citología veterinaria de diagnóstico.