La división celular suele tener un ritmo regular.
Los inicios de la citología como ciencia tuvieron lugar en 1839 con la primera teoría celular diseñada con precisión. Esta teoría sostiene que todos los organismos, sean plantas o animales, están compuestos por una o más unidades similares llamadas células. Cada una de estas unidades contiene individualmente todas las propiedades de la vida y es la piedra angular de prácticamente todos los organismos vivos. Además, la teoría celular establece que los rasgos heredados se transmiten de generación en generación a través de la división celular. La división celular suele tener un período cíclico regular y cronometrado durante el cual la célula crece, se divide o muere. Prácticamente todas las células realizan funciones bioquímicas, generando y transmitiendo energía y almacenando datos genéticos transmitidos a futuras generaciones de células. La citología se diferencia de su prima, la patología, en que la citología se enfoca en la estructura, función y bioquímica de las células vivas normales y anormales. La patología persigue cambios en las células causados por la descomposición y la muerte. Las células pueden variar mucho en tamaño y forma de un organismo a otro. Las estructuras celulares también difieren entre organismos unicelulares y multicelulares avanzados (plantas y animales) y células procarióticas más primitivas (p. ej., bacterias).
Las células vegetales son las más representativas de una célula prototípica, ya que tienen un núcleo, una membrana celular y una pared celular. Las células animales, por el contrario, no tienen una pared celular formalizada, aunque contienen las dos primeras. Las células procarióticas (p. ej., bacterias) son únicas porque no tienen núcleo y no poseen orgánulos de membrana. Las excepciones a la teoría celular incluyen organismos sincitiales (p. ej., algunos mohos mucilaginosos y platelmintos microscópicos) sin tabiques celulares; sin embargo, se derivan secundariamente de organismos con células a través de la descomposición de las membranas celulares. Finalmente, la cantidad de células en un organismo puede variar desde 1 para organismos como una ameba hasta 100 billones de células para un ser humano. La citología se ha beneficiado enormemente del microscopio electrónico, que revela dinámicas celulares internas y externas demasiado débiles para ser monitoreadas por microscopios ópticos tradicionales. Además, la microscopía de contraste o de fluorescencia con equipos de observación visual más tradicionales puede revelar la sustancia celular cuando el material celular específico se tiñe con un compuesto químico para iluminar estructuras específicas dentro de las células. Por ejemplo, los colorantes básicos (p. ej., hematoxilina) iluminan el núcleo, mientras que los colorantes ácidos (p. ej., eosina) tiñen el citoplasma (el material celular dentro de la membrana (excluyendo). Finalmente, las nuevas técnicas incluyen isótopos radiactivos y centrífugas de alta velocidad. en la identificación de características de ciertas enfermedades humanas hereditarias, así como en el mejoramiento de plantas y animales para ayudar a determinar la estructura cromosómica con el fin de diseñar y evaluar experimentos de selección. Una discusión mucho más controvertida se refiere al papel de la citología en relación con la clonación. Con el tiempo, la importancia de la citología como ciencia separada ha disminuido, integrándose con otras disciplinas para crear un enfoque bioquímico más completo. Las disciplinas relacionadas incluyen la citogenética (estudio del comportamiento de los cromosomas y genes relacionados con la herencia) y la citoquímica (estudio del contenido químico de células y tejidos).
VNJ 27-187-188). El propósito de este artículo es presentar a las enfermeras veterinarias la citología de fluidos de la cavidad corporal. Cubrirá las técnicas de preparación de fluidos para maximizar los beneficios de diagnóstico para el veterinario o el patólogo. Las cavidades del cuerpo, la pleura y el peritoneo, por ejemplo, están revestidas con membranas cubiertas con una sola capa de células mesoteliales. En circunstancias normales, se produce una pequeña cantidad de líquido en las cavidades, pero normalmente se reabsorbe en el sistema linfático. • aumento de la presión arterial debido a la sobrecarga de líquidos y congestión disminución del drenaje linfático debido a inflamación, congestión u obstrucción. Las muestras de fluidos generalmente se toman por abdominocentesis o toracocentesis, pero también se pueden tomar de masas quísticas que se encuentran en varias áreas del cuerpo. Luego, la muestra de líquido debe dividirse y colocarse en un tubo de sangre con EDTA, además de un tubo estéril normal en caso de que se necesite un cultivo. Es importante llenar el tubo de EDTA hasta el nivel correcto porque el anticoagulante puede afectar la forma y el tamaño de las células, además de diluir el número de células.
Primero realice un frotis directo usando la técnica de frotis de sangre o la técnica de concentración lineal descrita en la Parte 1 (VNJ 27: 187-188). Si hay "flotadores" (floculados), estos deben eliminarse con cuidado y prepararse utilizando la técnica de trituración descrita anteriormente. Estos frotis deben dejarse secar al aire antes de teñirlos o envasarlos para enviarlos a un laboratorio externo. Esta técnica es muy similar a la utilizada para la preparación de preparaciones de sedimento urinario. Coloque la muestra líquida en un tubo regular, como un tubo Eppendorf, y centrifugue la muestra a 3000 rpm durante aproximadamente tres a cinco minutos. Las velocidades exactas se pueden ajustar para adaptarse a su exprimidor individual. La forma más eficiente de preparar líquido hipocelular, como el LCR, es usar una centrífuga de citocentrifugación, pero es posible que no esté disponible en muchas prácticas. Una vez centrifugado, se elimina la mayor parte del sobrenadante, el sedimento se resuspende y luego se unta en un portaobjetos de microscopio utilizando el método de frotis de sangre o el método concentrado en línea.