Retire parte del sobrenadante

Por lo general, el líquido debe recolectarse asépticamente en un tubo de tamaño adecuado que contenga EDTA. Si el volumen de líquido lo permite, el líquido puede enviarse en un tubo con EDTA y un tubo de coágulo de tapa roja (p. ej., para cultivo potencial). NOTA: La colocación de una pequeña cantidad de líquido en algunos tubos grandes que contienen EDTA aumentará falsamente la gravedad específica y la concentración de proteína total, y puede provocar la contracción de las células osmóticas lo suficiente como para interferir con la evaluación citológica. Se puede usar un tubo sin anticoagulante para muestras que no se espera que coagule (por ejemplo, aquellas sin sangre y sin exudación de proteína marcada). Debido a que las células se deterioran rápidamente en muchas muestras líquidas, prepare frotis directos y frotis concentrados lo antes posible después de la recolección para enviarlos con líquido. Asegúrese de etiquetar los frotis como directos o concentrados. Se pueden encontrar consejos adicionales para el manejo de la citología de fluidos y la preparación de portaobjetos en dos artículos de boletines anteriores: Preparaciones de citología de fluidos y Preguntas frecuentes sobre patología clínica. Centrifugar una alícuota de la muestra de líquido.

Retire parte del sobrenadante. Resuspender el material celular. Prepare frotis concentrados como para un frotis de sangre de rutina. Recoja siempre el LCR en un tubo sin anticoagulante. El LCR requiere un manejo especial debido a las bajas concentraciones de células y proteínas. Póngase en contacto con el laboratorio para obtener asesoramiento sobre el manejo de muestras de LCR. Los frotis deben dejarse secar al aire; la fijación no es necesaria y debe evitarse. Etiquete el tubo con el nombre del animal, el nombre del dueño y la fecha de recolección. Etiquete los portaobjetos con el nombre del animal, el nombre del dueño, la fuente de la muestra e indique si el frotis es de líquido directo o concentrado. Las cuchillas deben almacenarse a temperatura ambiente y protegerse del polvo, rayones o roturas. Los portacuchillas de plástico rígido funcionan mejor. Evite el uso de portaobjetos de cartón a menos que se envíen en una caja rígida en lugar de un sobre. El líquido debe mantenerse refrigerado hasta su envío. Envíe el líquido con una bolsa de hielo. Evite el contacto directo con la bolsa de hielo.

VNJ 27-187-188). El propósito de este artículo es presentar a las enfermeras veterinarias la citología de fluidos de la cavidad corporal. Cubrirá las técnicas de preparación de fluidos para maximizar los beneficios de diagnóstico para el veterinario o el patólogo. Las cavidades del cuerpo, la pleura y el peritoneo, por ejemplo, están revestidas con membranas cubiertas con una sola capa de células mesoteliales. En circunstancias normales, se produce una pequeña cantidad de líquido en las cavidades, pero normalmente se reabsorbe en el sistema linfático. • aumento de la presión arterial debido a la sobrecarga de líquidos y congestión disminución del drenaje linfático debido a inflamación, congestión u obstrucción. Las muestras de fluidos generalmente se toman por abdominocentesis o toracocentesis, pero también se pueden tomar de masas quísticas que se encuentran en varias áreas del cuerpo. Luego, la muestra de líquido debe dividirse y colocarse en un tubo de sangre con EDTA, además de un tubo estéril normal en caso de que se necesite un cultivo. Es importante llenar el tubo de EDTA hasta el nivel correcto porque el anticoagulante puede afectar la forma y el tamaño de las células, además de diluir el número de células.

Primero realice un frotis directo usando la técnica de frotis de sangre o la técnica de concentración lineal descrita en la Parte 1 (VNJ 27: 187-188). Si hay "flotadores" (floculados), estos deben eliminarse con cuidado y prepararse utilizando la técnica de trituración descrita anteriormente. Estos frotis deben dejarse secar al aire antes de teñirlos o envasarlos para enviarlos a un laboratorio externo. Esta técnica es muy similar a la utilizada para la preparación de preparaciones de sedimento urinario. Coloque la muestra líquida en un tubo regular, como un tubo Eppendorf, y centrifugue la muestra a 3000 rpm durante aproximadamente tres a cinco minutos. Las velocidades exactas se pueden ajustar para adaptarse a su exprimidor individual. La forma más eficiente de preparar líquido hipocelular, como el LCR, es usar una centrífuga de citocentrifugación, pero es posible que no esté disponible en muchas prácticas. Una vez centrifugado, se elimina la mayor parte del sobrenadante, el sedimento se resuspende y luego se unta en un portaobjetos de microscopio utilizando el método de frotis de sangre o el método concentrado en línea.