Se caracteriza por lóbulos

El diagnóstico definitivo se basa en el examen histopatológico de una biopsia. Sin embargo, se han explorado otros enfoques, como la tinción vital, la citología exfoliativa, la citología de impresión y la ecografía de alta frecuencia. En algunos estudios, la aplicación tópica de azul de metileno y azul de toluidina al 1% tuvo una alta sensibilidad para la detección de OSSN cuando se realizó junto con un examen clínico.6 Rechazar la biopsia. Por citología de impresión, las características celulares de OSSN incluyen células displásicas queratinizadas a menudo acompañadas de hiperqueratosis, grupos de tipo sincitial y células displásicas no queratinizadas. Los carcinomas de células escamosas invasivos pueden mostrar una queratinización significativa y un mayor grado de inflamación, o poca evidencia de queratinización y la presencia de uno o más macronucleolos. Las lesiones displásicas (CIN) se clasifican como displasia leve, moderada o grave según la extensión de la afectación epitelial. Los cambios displásicos se originan en las capas basales y se extienden a la superficie, con displasia leve, moderada y severa que involucra el tercio inferior, hasta dos tercios y más de dos tercios del espesor epitelial, respectivamente.

Las figuras mitóticas son frecuentes y pueden ser atípicas. El epitelio afectado está engrosado y claramente delimitado del epitelio conjuntival adyacente de aspecto normal. Algunas lesiones pueden tener frondas de vasos sanguíneos en proliferación y tejido conectivo, simulando un papiloma sésil. El carcinoma in situ muestra una pérdida completa de la maduración celular normal con atipia citológica (figs. 27.22 y 27.23). Puede haber queratinización superficial y se pueden observar figuras mitóticas en todas las capas del epitelio. El carcinoma de células escamosas invasivo tiene características citológicas similares al carcinoma in situ, pero ha invadido a través de la membrana basal hacia la sustancia propia conjuntival. Se caracteriza por lóbulos, nidos y cordones atípicos de células escamosas con disqueratosis celular individual y diversos grados de queratinización (figs. 27.24 y 27.25). La actividad mitótica es generalmente baja y se pueden observar figuras mitóticas atípicas. Ohara y sus colegas, usando inmunohistoquímica para el índice de proliferación Ki-67, demostraron que la displasia (CIN) y el carcinoma de células escamosas tienen una proliferación significativamente mayor en comparación con lo normal. Además, el carcinoma de glándulas sebáceas, un diagnóstico diferencial importante, tiene un índice de proliferación significativamente mayor que el carcinoma de células escamosas.16 Las tinciones inmunohistoquímicas para adipofilina y receptor de andrógenos también pueden ser útiles para diferenciar las células sebáceas del carcinoma glandular del carcinoma de células escamosas. 6 En pacientes con pigmentación oscura, la OSSN puede estar pigmentada debido a la proliferación anormal de melanocitos, simulando un melanoma.

VNJ 27-187-188). El propósito de este artículo es presentar a las enfermeras veterinarias la citología de fluidos de la cavidad corporal. Cubrirá las técnicas de preparación de fluidos para maximizar los beneficios de diagnóstico para el veterinario o el patólogo. Las cavidades del cuerpo, la pleura y el peritoneo, por ejemplo, están revestidas con membranas cubiertas con una sola capa de células mesoteliales. En circunstancias normales, se produce una pequeña cantidad de líquido en las cavidades, pero normalmente se reabsorbe en el sistema linfático. • aumento de la presión arterial debido a la sobrecarga de líquidos y congestión disminución del drenaje linfático debido a inflamación, congestión u obstrucción. Las muestras de fluidos generalmente se toman por abdominocentesis o toracocentesis, pero también se pueden tomar de masas quísticas que se encuentran en varias áreas del cuerpo. Luego, la muestra de líquido debe dividirse y colocarse en un tubo de sangre con EDTA, además de un tubo estéril normal en caso de que se necesite un cultivo. Es importante llenar el tubo de EDTA hasta el nivel correcto porque el anticoagulante puede afectar la forma y el tamaño de las células, además de diluir el número de células.

Primero realice un frotis directo usando la técnica de frotis de sangre o la técnica de concentración lineal descrita en la Parte 1 (VNJ 27: 187-188). Si hay "flotadores" (floculados), estos deben eliminarse con cuidado y prepararse utilizando la técnica de trituración descrita anteriormente. Estos frotis deben dejarse secar al aire antes de teñirlos o envasarlos para enviarlos a un laboratorio externo. Esta técnica es muy similar a la utilizada para la preparación de preparaciones de sedimento urinario. Coloque la muestra líquida en un tubo regular, como un tubo Eppendorf, y centrifugue la muestra a 3000 rpm durante aproximadamente tres a cinco minutos. Las velocidades exactas se pueden ajustar para adaptarse a su exprimidor individual. La forma más eficiente de preparar líquido hipocelular, como el LCR, es usar una centrífuga de citocentrifugación, pero es posible que no esté disponible en muchas prácticas. Una vez centrifugado, se elimina la mayor parte del sobrenadante, el sedimento se resuspende y luego se unta en un portaobjetos de microscopio utilizando el método de frotis de sangre o el método concentrado en línea.

Estos portaobjetos deben dejarse secar al aire. Para muestras como LCR, donde los niveles de células serán muy bajos, es mejor colocar una gota de sedimento en un portaobjetos de microscopio y dejar que se seque. Ya se conoce la zona en la que se encontrarán las células, lo que facilita mucho el examen. Luego, los portaobjetos deben teñirse de acuerdo con su protocolo interno o enviarse sin teñir a su laboratorio externo para su revisión. La evaluación cuantificada normalmente se centra en los recuentos de glóbulos rojos y nucleados, así como en los niveles de proteínas y, si es necesario, los niveles de triglicéridos y colesterol. Se pueden usar analizadores automáticos para realizar recuentos de células, pero no siempre son confiables porque no permiten la presencia de coágulos y no son muy precisos para fluidos con muy pocas células, como el LCR. Los recuentos manuales deben realizarse utilizando una cámara de recuento, como un hemocitómetro Neubauer mejorado. Si la muestra es muy celular o turbia, el líquido debe diluirse con un tampón o líquido de dilución de glóbulos blancos, si solo está interesado en el recuento de células nucleadas (NCC).